Иммуноферментный анализ

Набор реагентов для конкурентного одностадийного иммуноферментного выявления суммарных антител к вирусу гепатита Дельта, без предварительной промывки планшета

Набор реагентов для иммуноферментного выявления иммуноглобулинов класса М к вирусу гепатита Дельта в сыворотке (плазме) крови. Набор рассчитан на 96 анализов, включая контроли. Определение проводится методом 'захвата' («Capture»-вариант) ИФА, без предварительной промывки планшета. Основан на взаимодействии IgM, содержащихся в исследуемой сыворотке крови, с моноклональными антителами против IgM человека, иммобилизованными в лунках полистиролового планшета. Специфические IgM к ВГД выявляют с помощью конъюгата рекомбинантного антигена ВГД с пероксидазой хрена. Во время первой инкубации происходит связывание IgM с моноклональными антителами. Во время второй инкубации связавшиеся иммуноглобулины взаимодействуют с рекомбинантным антигеном ВГД, конъюгированным с пероксидазой. После промывки комплекс инкубируют с раствором ТМБ, в это время происходит окрашивание раствора, степень окраски пропорциональна концентрации IgM к ВГД в образце. Оптическую плотность регистрируют при длине волны 450 нм

Набор реагентов для иммуноферментного подтверждения наличия HBsAg в 48 определениях. Одностадийная постановка с однократным внесением конъюгата, без предварительной промывки планшета

Набор реагентов для Capture-варианта (непрямое) иммуноферментного выявления иммуноглобулинов класса М к вирусу гепатита А в сыворотке или плазме крови. Адаптирован к автоматическим анализаторам открытого типа. Метод определения основан на твердофазном ИФА, специфическими компонентами набора являются моноклональные антитела против иммуноглобулинов класса М человека, иммобилизованные в лунках планшета, конъюгат моноклональных антител к ВГА с пероксидазой хрена, антиген ВГА, положительный и отрицательный контрольный образцы. Во время первой инкубации происходит связывание имеющихся в образце IgM с иммобилизованными на внутренней поверхности лунок стрипов моноклональными антителами против IgM человека. Во время второй стадии связавшиеся IgМ к ВГА взаимодействуют с добавленным в лунки комплексом антигена ВГА и моноклональных антител к антигену ВГА, конъюгированных с пероксидазой хрена. Количество связавшегося комплекса определяют цветной реакцией с ТМБ, остановленной внесением стоп-реагента, и измеряют оптическую плотность раствора в лунках при длине волны 450 нм. Интенсивность окрашивания пропорциональна концентрации IgМ к ВГА в анализируемой пробе

Набор реагентов для одностадийного иммуноферментного выявления суммарных антител к вирусам иммунодефицита человека 1 и 2 типов всех классов. Адаптирован для применения на ИФА анализаторах, с использованием шейкера и без него. Не требует предварительной промывки планшета. Время реакции: 1 час 10 минут

Набор реагентов для твердофазного иммуноферментного выявления антител к вирусам иммунодефицита человека 1 и 2 типов. Выявляет антитела к ВИЧ-1,2 всех классов

Набор реагентов для иммуноферментного выявления суммарных антител к ВИЧ-1,2 и антигена р24 ВИЧ-1, стрип 24х8 на 192 определения

Набор реагентов для непрямого иммуноферментного выявления иммуноглобулинов класса М к вирусу гепатита С

Тест-система иммуноферментная унифицированная для выявления суммарных антител к вирусам иммунодефицита человека 1 и 2 типов. Набор диагностический с 2 разборными планшетами рассчитан на 192 определения, включая контрольные. Предназначен для ручной постановки и на ИФА-анализаторах открытого типа с возможностью дробного использования. Метод основан на твердофазном иммуноферментном сэндвич анализе с применением антигенов ВИЧ-1 и ВИЧ-2. Присутствующие в исследуемом образце специфические антитела к вирусу образуют на твердой фазе комплекс с антигенами. Специфические антитела в составе иммунных комплексов выявляются биотинилированным конъюгатом антигенов. Биотин в составе иммунных комплексов проявляется вторым конъюгатом - стрептавидином, меченным пероксидазой, с последующей детекцией субстратной смесью. После остановки реакции оптическая плотность измеряется с использованием спектрофотометра при длине волны 450 нм или при 2х длинах волн 450/620 нм

Набор реагентов для двухстадийного иммуноферментного подтверждения присутствия HBs-антигена вируса гепатита В. Твердофазный сэндвич метод без предварительного разведения исследуемых образцов

Набор реагентов для иммуноферментного выявления HBs-антигена вируса гепатита В

Набор реагентов для иммуноферментного выявления HBs-антигена вируса гепатита В, без предварительного разведения исследуемых образцов (в сухом стриппированном планшете без промывки). Адаптирован для применения на автоматических анализаторах открытого типа. Объемное равенство контролей и образцов, наличие унифицированных неспецифических компонентов, слабоположительного контрольного образца - жидкий, с концентрацией HBsAg (0,05±0,02) МЕ/мл. Объем внесения раствора ТМБ не более 100 мкл. Количество промывок раствором ФСБ-Т после каждой инкубации 5 раз, всего не менее 10 - без финальной отмывки водой

Набор реагентов для выявления иммуноглобулинов класса G к core-антигену вируса гепатита В в сыворотке (плазме) крови методом непрямого иммуноферментного анализа, без предварительного разведения исследуемого образца. Рассчитан на проведение 96 анализов, включая контроли, возможны 12 независимых постановок ИФА по 8 анализов каждая, включая контрольные пробы. Метод определения основан на двухстадийном твердофазном ИФА с применением рекомбинантного core-антигена вируса гепатита В (HBcAg) и моноклональных антител к IgG человека. На первой стадии анализа исследуемые и контрольные образцы инкубируют, при наличии в сыворотке специфических антител к HBcAg формируются комплексы антиген-антитело. На второй стадии связавшиеся специфические IgG взаимодействуют с конъюгатом моноклональных антител IgG с пероксидазой хрена. Комплекс антиген-антитело-конъюгат выявляется реакцией с ТМБ. После добавления стоп-реагента измеряют оптическую плотность растворов в лунках при длине волны 450 нм, интенсивность окрашивания пропорциональна количеству связанных в комплекс IgG к HBcAg

Тест основан на принципе твердофазного непрямого иммуноферментного анализа. Очищенные антигены GAD адсорбированы в лунках микропланшета. При внесении в лунки контролей и разведенных исследуемых сывороток, присутствующие в них IgG антитела к GAD связываются с иммобилизованными антигенами. Не связавшиеся антитела удаляются промывкой. После этого в лунки вносится ферментный конъюгат (антитела козы к IgG человека, меченные щелочной фосфатазой), который связывается с комплексом «антиген-антитело», иммобилизованным на поверхности лунок. Несвязавшийся конъюгат удаляется промывкой. Добавление субстрата (паранитрофенилфосфата - PNPP) приводит к развитию окраски, интенсивность которой прямо пропорциональна концентрации антител к GAD и может быть измерена фотометрически. Положительный и отрицательный контроли служат для внутреннего контроля качества и подтверждения достоверности результатов.

Тест Iso-Insulin ELISA представляет собой метод твердофазного двухстадийного иммуноферментного анализа. В основе метода лежит прямой “сэндвич”-вариант анализа, в котором два вида моноклональных антител направлены по своему действию на различные антигенные детерминанты молекулы инсулина. Во время инкубации присутствующий в образце инсулин реагирует с антителами к инсулину, конъюгированными с пероксидазой хрена, и одновременно - с антителами к инсулину, связанными в лунках микропланшета. Промывка удаляет не связавшиеся антитела, меченные ферментом. Детекцию связавшегося конъюгата осуществляют по его реакции с ферментным субстратом 3,3’,5,5’-тетраметилбензидином. Реакцию останавливают добавлением кислоты, чтобы получить колориметрическую конечную точку для измерения оптической плотности (ОП) на спектрофотометре

Полный набор реагентов Islet Cell Autoantibodies, ICA ELISA основан на принципе твердофазного непрямого иммуноферментного анализа. Высокоочищенная смесь антигенов панкреатических клеток адсорбирована в лунках микропланшета. При внесении в лунки контролей и разведенных исследуемых сывороток, присутствующие в них антитела к клеткам островков Лангерганса связываются с иммобилизованными антигенами. Несвязавшиеся антитела удаляются промывкой. После этого в лунки вносится ферментный конъюгат (антитела козы к IgG человека, меченные щелочной фосфатазой), который связывается с комплексом «антиген-антитело», иммобилизованным на поверхности лунок. Несвязавшийся конъюгат удаляется промывкой. Добавление субстрата (паранитрофенилфосфата - PNPP) приводит к развитию окраски, интенсивность которой прямо пропорциональна концентрации антител к ICA и может быть измерена фотометрически. Положительный контроль служит для внутреннего контроля качества и подтверждения достоверности результатов

Тест Insulin ELISA основан на методе твердофазного одностадийного иммуноферментного анализа “сэндвич”-типа. Используемые в тесте два вида моноклональных антител направлены по своему действию на различные антигенные детерминанты молекулы инсулина. Во время инкубации присутствующий в образце инсулин реагирует с антителами к инсулину, конъюгированными с пероксидазой хрена, и одновременно - с антителами к инсулину, связанными в лунках микропланшета. Промывка удаляет не связавшиеся антитела, меченные ферментом. Определение связавшегося конъюгата осуществляют по его реакции с ферментным субстратом 3,3’,5,5’-тетраметилбензидином. Реакцию останавливают добавлением кислоты, чтобы получить колориметрическую конечную точку для измерения оптической плотности (ОП) на спектрофотометре

Тест Ultrasensitive Insulin ELISA представляет собой твердофазный двухстадийный иммуноферментный анализ. В основе метода лежит прямой “сэндвич”-ИФА, в котором два вида моноклональных антител направлены на различные антигенные детерминанты молекулы инсулина. Во время инкубации присутствующий в образце инсулин реагирует с антителами к инсулину, конъюгированными с пероксидазой хрена, и одновременно - с антителами к инсулину, иммобилизированными в лунках микропланшета. Промывка удаляет не связавшиеся антитела, меченные ферментом. Детекцию связавшегося конъюгата осуществляют по его реакции с ферментным субстратом 3,3’,5,5’-тетраметилбензидином. Реакцию останавливают добавлением кислоты, чтобы получить колориметрическую конечную точку для измерения оптической плотности (ОП) на спектрофотометре